Ampli-LAMP Listeria monocytogenes KIT
Zestaw odczynników do identyfikacji materiału genetycznego bakterii z rodzaju Listeria monocytogenes techniką izotermalnej amplifikacji DNA (LAMP).
Przeznaczenie testu:
Pałeczki Listeria monocytogenes należą do Gram-dodatnich bakterii wywołujących liczne zakażenia u ludzi oraz zwierząt. Patogeny te są rozpowszechnione w środowisku i bardzo często są przenoszone przez żywność, powodując zatrucia pokarmowe. Bakterie Listeria monocytogenes są w stanie rozwijać się w warunkach tlenowych lub beztlenowych. Namnażają się one w temperaturze od 0.4° do 50° C, zasiedlając środowisko o bardzo różnym zakresie pH (4.4-9.4). Niezmiernie problematyczne jest także to, że pałeczki Listeria monocytogenes są odporne na małe dawki konserwantów i środków myjących oraz niewystarczający okres pasteryzacji i mrożenia. Dawka zakaźna niezbędna do wywołania objawów chorobowych u ludzi i zwierząt, w zależności od szczepu Listeria monocytogenes waha się od 102?103 komórek bakteryjnych. Dotychczasowe metody wykrywania tych Gram-dodatnich pałeczek są praco i czasochłonne. Nasz test pozwala na skrócenie czasu rozpoznania patogennych bakterii z rodzaju Listeria monocytogenes. Opiera się on na jakościowej detekcji DNA tych pałeczek.
W zależności od wielkości, zestaw pozwala na przeprowadzenie 200 i 400 testów.
Zestaw zawiera:
- Isothermal Master Mix fluorescent dye, (bufor reakcyjny, MgCl2, dNTPs, pirofosfataza, polimeraza GspSSD, barwnik fluorescencyjny ? pochodna 6?FAM)
- primers mix (F3, B3, FIP, BIP, LF, LB każdy w stężeniu [10 ?M])
- kontrolę pozytywną DNA
- sterylną wodę MiliQ do reakcji.
Zasada działania testu:
Test oparty jest na technice LAMP (ang. Loop-mediated Isothermal Amplification) i zapewnia bardzo szybką oraz wysoce specyficzną identyfikację materiału genetycznego bakterii Listeria monocytogenes. Zoptymalizowane mieszaniny i specjalnie zaprojektowane startery umożliwiają specyficzną amplifikację genu kodującego listeriolizynę.
Czas potrzebny na przeprowadzenie reakcji to ok. 30 minut w przypadku wykorzystania standardowego termocyklera oraz 10-20 minut w przypadku termocyklera do Real-time PCR lub platformy Genie II. Test oparty o metodę amplifikacji LAMP jest co najmniej dwukrotnie szybszy od testu opartego o standardową amplifikację PCR.
W zależności od urządzenia wykorzystanego do przeprowadzenia testu, różni się sposób analizy wyników testu:
PLATFORMA |
SPOSÓB ANALIZY WYNIKÓW |
Łaźnia wodna
Blok grzewczy
Termocykler do PCR |
Rozdział elektroforetyczny w 2% żelu agarozowym |
Obserwacja fluorescencji w probówce w świetle UV Analiza turbidymetryczna ? obserwacja zmętnienia roztworu w probówce po reakcji LAMP |
Termocykler do Real-time PCR
Platforma Genie II do LAMP |
Analiza przyrostu ilości produktu w czasie rzeczywistym, na podstawie pomiaru fluorescencji (odczyt przez kanał FAM)
Analiza profilu topnienia produktu po reakcji LAMP |
Produkt reakcji wybarwiony bromkiem etydyny w żelu agarozowym ma postać tzw. drabinki (ang. ladder-pattern structure), ponieważ w wyniku reakcji LAMP powstają różnej długości konkatamery złożone z powtórzeń sekwencji matrycowej. Wynik pozytywny reakcji można również zaobserwować w postaci silnej fluorescencji produktów reakcji w świetle UV lub w postaci zmętnienia roztworu w probówce po reakcji (analiza turbidymetryczna).
Wynik pozytywny reakcji przeprowadzonej w termocyklerze do Real-time PCR oraz na platformie Genie II umożliwia analizę przyrostu ilości produktu w czasie rzeczywistym (proporcjonalnie do wzrostu emisji fluorescencji, odczytywanej przez kanał FAM).
Możliwa jest również analiza specyficzności reakcji na podstawie profilu topnienia produktów amplifikacji (ang. melt curve analysis). W analizie Melt Peak widoczny jest jeden specyficzny produkt reakcji, który topnieje w zakresie temp. 86 ? 87°C.
UWAGA: Zaleca się prowadzenie analizy wyników testu w układzie zamkniętym (wizualizacja w świetle UV lub na podstawie analizy profilu topnienia produktów reakcji).
Zawartość zestawu Ampli-LAMP Listeria monocytogenes
Lp. |
Element zestawu |
AML-SLM-200 |
AML-SLM-400 |
[1] |
Isothermal Master Mix |
2 szt. |
4 szt. |
[2] |
Ampli-LAMP Listeria monocytogenes Primers Mix |
1 szt. |
2 szt. |
[3] |
Ampli-LAMP Listeria monocytogenes Positive Control |
1 szt. |
1 szt. |
[4] |
MiliQ Water |
1 szt. |
1 szt. |
Warunki przechowywania
- przechowywanie długoterminowe: -20°C
- przy częstym, rutynowym użyciu: +4°C
- chronić przed światłem
- unikać częstego zamrażania i rozmrażania.
Zalecana procedura przed analizą LAMP
Zalecamy przeprowadzenie 10-12 h hodowli wstępnej na pożywce Half Frazer broth, co znacznie podwyższa czułość analityczną całej metody. Po namnażaniu wstępnym konieczne jest prowadzenie ekstrakcji DNA.
PRZEPROWADZENIE TESTU AMPLI-LAMP Listeria monocytogenes
Warunki reakcji:
STANDARD PCR
Etap |
Temperatura |
Czas |
Ilość cykli |
Amplifikacja |
65°C |
30 min |
1 |
Chłodzenie |
4°C |
1 min |
|
REAL-TIME PCR
Etap |
Temperatura |
Czas |
Ilość cykli |
Amplifikacja |
65°C |
30 sek |
70 |
Pomiar fluorescencyjny ilości produktu amplifikacji po każdym cyklu reakcji, w czasie rzeczywistym |
Topnienie produktu |
65 ? 98°C |
0,5°C / 5 sek |
|
Pomiar fluorescencji po każdorazowej zmianie temp. o 0,5°C |
Chłodzenie |
4°C |
30 sek |
|
Przygotowanie mieszaniny reakcyjnej
Lp. |
Element zestawu |
Objętość na 1 reakcję |
[1] |
Isothermal Master Mix |
7,5 ?l |
[2] |
Ampli-LAMP Listeria monocytogenes Primers Mix:
Primer F3/B3 [10 ?M] 0,5 ?l
Primer FIP/BIP [10 ?M] 2 ?l
Primer LF/LB [10 ?M] 1 ?l |
3,5 ?l |
[3] |
Ampli-LAMP Listeria monocytogenes
Positive Control
lub inna matryca DNA |
1 ?l |
[4] |
Ampli-LAMP Listeria monocytogenes
MiliQ Water |
1 ?l |
|
Razem |
13 ?l |
Obligatoryjne kontrole testu Ampli-LAMP Listeria monocytogenes
Dla prawidłowej interpretacji wyników testu należy obok próbek badanych zastosować trzy kontrole reakcji:
- kontrolę pozytywną reakcji (Positive Control), która pozwala ocenić poprawność przebiegu amplifikacji docelowego produktu ? matrycę stanowi próbka zawierająca amplifikowaną sekwencję DNA [3].
- kontrolę negatywną reakcji, która pozwala ocenić poprawność przebiegu amplifikacji ? matrycę stanowi izolat DNA ze zdrowej tkanki zwierzęcej.
- kontrolę negatywną reakcji bez matrycy DNA, która pozwala ocenić czystość odczynników używanych do reakcji amplifikacji LAMP ? zamiast matrycy, woda MiliQ [4].
Fakultatywnie kontrole testu Ampli-LAMP Listeria monocytogenes
Okresowo zaleca się przeprowadzić:
- kontrolę negatywną izolacji DNA ? pozwala ocenić czystość odczynników do izolacji. Należy wykonać jedną taką kontrolę w każdej serii izolacji lub okresowo w krótkich odstępach czasu, izolując z wody (zamiast z zainfekowanej tkanki).
- kontrolę pozytywną izolacji ? pozwala potwierdzić skuteczność procesu izolacji. Należy stosować okresowo np. dla nowej partii odczynników do izolacji DNA (do izolacji należy podać tkankę naturalnie lub sztucznie zainfekowaną bakterią).
Nr kat. produktów:
-AML-Lm-200 (200 reakcji)
-AML-LM-400 (400 reakcji)